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多肽純常見15個問題

更新時間:2023-02-16點擊次數(shù):333

1、檢測肽純度的一般方法是什么?


它通常由高效液相色譜法(HPLC)測定。
2、肽含量和肽純度有什么區(qū)別?
肽不僅包含正確的肽,還包含雜質(zhì),例如生產(chǎn)中的水和有機鹽。肽純度是指相對于所有雜質(zhì)(水分除外)正確肽的數(shù)量。然而,肽含量是目標(biāo)肽相對于樣品中其他所有物質(zhì)的百分比,通常由 N 元素分析和氨基酸分析確定。因此,即使肽純度達到99%,考慮到水和有機鹽,含量仍可能為70%-80%。
3、肽分離純化的技術(shù)是什么?
見的技術(shù)是反相高效液相色譜 (RP-HPLC)。
4、RP-HPLC 中通常使用哪種流動相進行肽分離和純化?
見的流動相是水和乙腈,三充當(dāng)離子對試劑。根據(jù)不同的肽段,采用合適的梯度洗脫進行分離。
5、為什么在流動相中添加 TFA 作為離子對試劑?是否有任何其他流動相或離子對試劑可用于肽分離和純化?
TFA可用于調(diào)節(jié)流動相的pH值,作為離子對試劑與多肽相互作用,增強分離效果,顯著改善峰形。
其他用于多肽分離純化的流動相或離子對試劑包括乙酸體系、磷酸體系、鹽酸體系、七氟丁酸等,可通過調(diào)節(jié)pH達到很好的分離效果。
6、如何溶解多肽?
大多數(shù)肽可以溶解在超純水中。對于一些不溶性肽,需要先分析氨基酸序列。酸性肽可先溶于少量堿性溶液(如0.1%氨水),然后稀釋至所需濃度。作為堿性肽,可溶于少量酸性溶液(如乙酸、),然后稀釋至所需濃度。對于疏水肽,可溶于強極性有機溶劑,如DMF、甲醇、丙醇、異丙醇、DMSO等。
7、RP-HPLC中常用的色譜填料有哪些?
見的填料是 C18、C8 和 C4 反相色譜柱。
8、純化中如何選擇色譜填料?
不同序列的肽在理化特性和疏水性方面表現(xiàn)出很大差異。在大多數(shù)情況下,C18 色譜柱對分子量小于 4000 或親水性的肽段的分離。C4 柱適用于分子量超過 5000 或疏水末端。C8列介于C18和C4之間,其效果更類似于C18。對于一些特殊的選擇性肽段,也可以選擇苯基柱和聚合物柱。
9、純化中選擇聚合物填料的原則是什么?
當(dāng)需要更高的 pH 或溫度時,具有寬 pH 范圍的聚合物 HPLC 柱可能適用于純化。它們在pH條件下不會降解,因此可以使用強酸和強堿作為流動相進行分離和純化。
10、什么會影響多肽純化的結(jié)果?
影響因素很多,主要包括流動相、色譜柱類型、柱溫、波長、色譜儀性能等。這些差異可能會導(dǎo)致最終結(jié)果出現(xiàn)錯誤。
11、頻繁的基線漂移可能是什么原因?如何解決?
反相分離中基線漂移的主要原因是固定 TFA 濃度的梯度洗脫會導(dǎo)致 210-220 nm 處的吸收基線發(fā)生偏移。建議使檢測波長盡可能接近215 nm,以減少或消除TFA吸收光譜變化對基線漂移的影響。此外,與溶劑 B 相比,溶劑 A 中添加的 TFA 減少 15% 可以補償基線漂移。例如,如果溶劑 A 中的 TFA 濃度為 0.1%,則建議溶劑 B 中添加 0.085%
圖片
12、反相色譜純化后,如何從最終產(chǎn)品中去除流動相中的TFA、乙腈等雜質(zhì)?
只要不超過耐受范圍,凍干可能是去除大部分 TFA 和乙腈的和的方法。但該方法不能滿足一些對TFA含量要求較高的多肽類藥物的要求。應(yīng)與它們進行特殊的鹽轉(zhuǎn)化和脫鹽。
13、肽的一般鹽形式有哪些?如何轉(zhuǎn)換鹽形式或脫鹽?
大多數(shù)肽在TFA系統(tǒng)下純化,因此TFA鹽是見的形式,其次是乙酸鹽和鹽酸鹽形式,很少有肽藥物是特殊鹽形式。離子交換和 HPLC 是的鹽轉(zhuǎn)化方法,而 G25(GE Healthcare 的葡聚糖凝膠)柱可用于脫鹽。
14、TFA 是否僅用于調(diào)節(jié)緩沖液中的 pH 值?TFA 濃度越高,基線漂移越嚴(yán)重。這是否意味著如果緩沖液的 pH 值允許,TFA 的濃度越低越好?
TFA可以作為離子對,濃度通常在0.05-0.1%左右。濃度過高會使溶液過酸,影響色譜柱的使用時間。
同時,TFA 可以抑制硅膠表面的硅烷醇基團,改善堿性化合物的峰形。如果使用 0.1% TFA 有時分離效果不好,可以嘗試 0.2% TFA,但使用后需要立即沖洗色譜柱。
在梯度洗脫時,由于基線漂移,它對制備的影響很小。
15、為什么肽樣品需要在上樣柱前進行預(yù)處理?有哪些制備方法?
制備柱更容易被污染,因為與分析柱相比,它們處理的樣品更多。因此,需要對樣品進行預(yù)處理以延長色譜柱的使用時間。主要有五種方法:過濾、離心、柱前過濾和在線過濾。





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